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Natural Product Efficacy Evaluation

Feline-Derived Ligilactobacillus agilis ZY25 and Ligilactobacillus salivarius ZY35 Alleviate Enteropathogenic Escherichia coli-Induced Intestinal Injury and Microbial Dysbiosis in Mice

정리일 2026-06-18

Feline-Derived Ligilactobacillus agilis ZY25 and Ligilactobacillus salivarius ZY35 Alleviate Enteropathogenic Escherichia coli-Induced Intestinal Injury and Microbial Dysbiosis in Mice

  • 저자: Wang W; Pan L; Miao C; Chen Q; Wang H; Sun C; Chang X; Zhang Y
  • 출처: (2026)
  • DOI/링크: 10.3390/microorganisms14030679
  • 투고일: 2026-02-12

TL;DR

건강한 고양이 유래 L. agilis ZY25와 L. salivarius ZY35의 지속 투여가 EPEC 감염 마우스 모델에서 장벽 기능 보호, 염증 억제, 마이크로바이옴 안정화 효과를 항생제 처치군보다 일관되게 나타냈다.

1. 연구 배경 및 동기

  • 다루는 문제: 장병원성 대장균(EPEC)은 장내 장벽 손상, 염증, 마이크로바이옴 교란을 유발하여 설사 및 성장 저해를 일으킨다. 고양이 유래 Ligilactobacillus 균주의 EPEC 감염 방어 기전 및 프리바이오틱 효과는 아직 규명되지 않았다.

2. 관련 연구

구분 기존 연구 이 논문
균주 출처 인간 유래 또는 상업 프로바이오틱 균주 건강한 고양이 장관 유래 Ligilactobacillus 균주
병원체 일반적 장염 모델 EPEC(장병원성 대장균) 특이적 감염 모델
투여 전략 감염 후 단일 투여 전략 연구 감염 전·후·지속 투여 3가지 전략 비교 평가
  • 고양이 유래 프로바이오틱은 숙주 특이적 적응성을 가져 고양이 장관에서 우수한 정착력을 발휘할 것으로 기대되나, 실제 감염 보호 기전은 불명확하였다.
  • EPEC 감염은 설사·성장 저해를 유발하는 주요 수의 장 병원체로, 항생제 대안에 대한 연구가 진행 중이다.

3. 핵심 기여

  1. 건강한 고양이에서 분리한 L. agilis ZY25와 L. salivarius ZY35의 EPEC 감염 방어 효능을 C57BL/6 마우스 모델에서 감염 전·후·지속 투여 3가지 전략으로 비교 평가하였다.
  2. 지속 투여군(PRO)이 장 장벽 기능(D-lactate, DAO, LPS 감소), 면역 균형(IL-4, IL-10 증가; TNF-α, IL-6, IL-1β 감소), 마이크로바이옴 안정화(Lachnospiraceae_NK4A136 증가, Desulfovibrio 억제)에서 항생제(CTC)군보다 일관되게 우수함을 입증하였다.
  3. 고양이 유래 프로바이오틱이 고양이 위장관 건강 관리에 활용될 수 있는 개념 증명(proof-of-concept) 근거를 제공하였다.

4. 제안 방법론

  • 전체 접근 논리: 건강한 고양이에서 분리한 L. agilis ZY25와 L. salivarius ZY35를 C57BL/6 마우스 48마리에 투여하여 EPEC 감염(1×10⁹ CFU/mL, 8~14일 매일 경구)에 대한 보호 효과를 6군, 21일간 다중 지표로 평가하였다.
  • 단계:
    • (1) 건강한 고양이 장관에서 Ligilactobacillus 균주(ZY25, ZY35) 분리·동정
    • (2) C57BL/6 마우스 48마리(n=8/군)를 대조(CON), EPEC 모델(MOD), 항생제(CTC), 감염 후 투여(PRO-T), 감염 전 투여(PRO-P), 지속 투여(PRO) 6군으로 배정
    • (3) 8~14일 EPEC 경구 감염(1×10⁹ CFU/mL, 0.2 mL/일)
    • (4) 체중, 설사 빈도, 혈청 D-lactate·DAO·LPS(장 장벽 지표), 면역글로불린(IgA·IgG·IgM), 사이토카인(TNF-α·IL-6·IL-1β·IFN-γ·CRP; IL-4·IL-10), 장내 마이크로바이옴(16S rRNA) 측정

5. 실험 설정

항목 내용
대상/재료 C57BL/6 마우스 48마리(n=8/군); L. agilis ZY25 + L. salivarius ZY35(고양이 유래)
처리 조건 6군: CON, MOD(EPEC), CTC(클로르테트라사이클린), PRO-T(감염 후 투여), PRO-P(감염 전 투여), PRO(지속 투여); 21일 실험
대조군 CON(정상), MOD(EPEC 감염+무처치), CTC(항생제 표준 치료)
측정 방법 체중, 설사 빈도, 혈청 D-lactate·DAO·LPS, IgA/IgG/IgM, 사이토카인 패널, 장 조직 병리, 16S rRNA 마이크로바이옴 분석

6. 실험 결과 분석

지표 PRO군(지속 투여) 변화(Δ) 조건 · 유의성
체중 감소 억제(MOD 대비 유의한 회복) p<0.05
혈청 D-lactate·DAO·LPS 유의한 감소(↓) 장 장벽 회복 지표, p<0.05
IgA·IgG·IgM 증가(↑) 전신 면역 강화
TNF-α·IL-6·IL-1β·IFN-γ·CRP 감소(↓) 항염증 효과
IL-4·IL-10 증가(↑) 항염증 사이토카인 증가
Lachnospiraceae_NK4A136 증가(↑) 유익균 풍도 증가
Desulfovibrio 억제(↓) 염증 유발 균 감소

제안 기전(인과 사슬): 고양이 유래 프로바이오틱 지속 투여 → 장 상피 정착 → 병원체(EPEC) 경쟁적 배제 → 장 장벽 밀착연접 보호 → 장 투과성 감소(D-lactate·DAO·LPS↓) → Th1/Th2 면역 균형 회복(IL-10↑, TNF-α↓) → 설사·성장 저해 개선

7. 비판적 평가

강점

  • 감염 전·후·지속 3가지 투여 전략을 동시에 비교하여 최적 투여 타이밍을 제시
  • 항생제(CTC)와의 직접 비교를 통해 프로바이오틱의 항생제 대안 가능성 입증
  • 장 장벽, 면역, 마이크로바이옴 다각도 지표로 기전을 종합 분석

한계 · 의문

  • 마우스 모델로서 고양이 장관에서의 직접 효과는 별도 검증이 필요하다.
  • 단일 병원체(EPEC) 감염 모델에 국한되어 다른 원인의 장 질환에 대한 적용 가능성은 미지수이다.
  • 적정 투여 용량 및 투여 기간에 대한 추가 최적화 연구가 필요하다.

8. 향후 연구 방향

  • 고양이 직접 EPEC 또는 기타 장 병원체 감염 모델에서 L. agilis ZY25·L. salivarius ZY35의 효능 검증
  • 다양한 장 질환(FCV 장염, panleukopenia 등)에 대한 고양이 유래 프로바이오틱 보호 효능 평가
  • 고양이 유래 균주의 상업적 반려동물 사료 및 보충제 적용을 위한 안전성·안정성 연구

9. 결론

EPEC 감염은 장 장벽 손상, 염증, 마이크로바이옴 교란을 통해 설사와 성장 저해를 유발한다. 본 연구는 건강한 고양이 유래 L. agilis ZY25와 L. salivarius ZY35를 C57BL/6 마우스 EPEC 감염 모델에 투여하여, 지속 투여군(PRO)이 항생제보다 장 장벽 기능 보호, 염증 사이토카인 감소, 마이크로바이옴 안정화에서 일관되게 우수한 효과를 나타냄을 입증하였다. 이 결과는 고양이 유래 프로바이오틱이 고양이 위장관 건강 관리에 적용될 수 있는 유망한 후보임을 시사한다.

Keywords

Ligilactobacillus agilis, Ligilactobacillus salivarius, probiotic, cat, EPEC, intestinal barrier, microbiome

원문 그림

Figure 1. Effects of probiotic intervention on body weight and fecal score in EPEC-challenged mice.
Figure 1. Effects of probiotic intervention on body weight and fecal score in EPEC-challenged mice.
Figure 2. Probiotic intervention modulates serum biomarkers of intestinal permeability and endotox-
Figure 2. Probiotic intervention modulates serum biomarkers of intestinal permeability and endotox-
Figure 3. Effects of probiotic regimens on serum immunoglobulins in challenged mice. (A) Serum
Figure 3. Effects of probiotic regimens on serum immunoglobulins in challenged mice. (A) Serum
Figure 5. Effects of probiotic regimens on spleen morphology, splenic histology, and organ weights.
Figure 5. Effects of probiotic regimens on spleen morphology, splenic histology, and organ weights.
w2026felinederived
Figure 6. Probiotic regimens improve jejunal and ileal histomorphology following challenge. (A) Rep-
Figure 6. Probiotic regimens improve jejunal and ileal histomorphology following challenge. (A) Rep-
w2026felinederived
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원문 그림 · 라이선스: cc-by